人体每日摄入上百克外源性食物蛋白。这些蛋白同样可被免疫系统识别为非己抗原，却通常不引发炎症，而是诱导一种主动的放行机制——免疫耐受；耐受一旦打破即表现为食物过敏。全球约6%–8%的儿童受食物过敏困扰，花生过敏更是儿童致死性过敏反应的首要病因，而临床上可改变病程的手段仍极为有限。
FOXP3⁺调节性T细胞（Treg）被认为主要介导了免疫耐受，其发现者于2025年被授予诺贝尔生理学与医学奖。例如肠道中生存着大量共生微生物，识别微生物的Treg细胞是介导对微生物产生免疫耐受的关键。对于食物抗原的耐受，经典理论同样认为主要由Treg介导：肠腔中的食物抗原先被固有层的 CX3CR1⁺巨噬细胞通过跨上皮伸出的树突"取样"，转交给 CD103⁺树突状细胞（DC）；后者携带抗原从黏膜迁移到肠系膜淋巴结（mLN），在那里诱导出食物抗原特异性的 FOXP3⁺ Tregs；这些 Treg 再归巢回小肠，压制针对食物的炎症反应。近两年，多个团队几乎同时发现了一群 RORγt⁺的特殊抗原提呈细胞（也称 Thetis 细胞），它们是高效诱导食物特异性 Treg 的关键角色，让这条通路的拼图更加完整。"专职抗原提呈细胞诱导Treg"，是食物耐受领域的经典认知。
然而，在这幅图景里，有一类细胞显得格格不入——肠道上皮细胞（IEC）。论数量与位置，它才是最先、也是最大规模接触食物抗原的细胞：人的小肠黏膜展开面积可达 30 平方米，而这层单层上皮就是食物与机体之间唯一的物理屏障。更耐人寻味的是，小肠上皮细胞会持续表达 MHC II 类分子（MHCII），而 MHCII 通常被认为是 DC、巨噬细胞、B 细胞这些专职抗原提呈细胞的身份标志。近年的研究不断提示 IEC 表达的 MHCII 与食物耐受有关：敲除 IEC 的 MHCII，小鼠更容易发生食物过敏；食物诱导的 CD4⁺CD8αα⁺上皮内淋巴细胞（IEL）的生成也需要它。但所有这些都属于相关性证据。最根本的一环始终悬而未决：生理情况下的肠道上皮细胞的 MHCII 上，究竟装载着什么？有没有哪一个 T 细胞克隆，真的在识别它？
近日，免疫应答与免疫治疗全国重点实验室（以下简称实验室）朱书教授团队在 Vita 期刊发表了题为 "Food antigen-specific Type 1 Regulatory T cells induced by intestinal epithelial cells maintain food tolerance" 的研究论文，给出了答案。团队发现，小肠固有层中存在一群 FOXP3⁻IL-10⁺的 1 型调节性 T 细胞（Type 1 regulatory T cell, Tr1），它们所识别的抗原，正是由肠道上皮细胞直接提呈的食物来源多肽。这条"上皮细胞诱导Tr1"的通路拓展了食物耐受的经典认知，首次明确了上皮细胞抗原提呈的生理学功能。更进一步，团队据此通路设计了一种靶向肠道上皮的多肽递送策略，人工诱导Tr1细胞，在小鼠模型中显著缓解了食物过敏。
团队首先在IL-10GFP/FOXP3RFP双报告小鼠中检查35个组织与器官：Treg广泛分布于全身，而FOXP3⁻IL-10⁺ Tr1细胞几乎仅见于小肠固有层，与食物抗原的分布高度重合。为验证因果关联，团队采用了一组严格对照的合成饲料——氨基酸饲料（AAD）与酪蛋白饲料（CAD），二者营养组成完全一致，仅前者提供游离氨基酸、后者提供完整蛋白：改喂AAD后Tr1细胞近乎消失，而同一部位Treg数量不变。单细胞转录组与TCR联合测序显示，Tr1与Treg的TCR克隆型几乎完全不重叠，且仅Tr1可被负载食物抗原的抗原提呈细胞激活。
是谁在向 Tr1 提呈这些食物抗原？团队将上皮特异性敲除 MHCII 的小鼠（H2-Ab1ΔIEC）与双报告小鼠杂交，发现即便正常进食含完整酪蛋白的饲料，小肠固有层的 Tr1 依然几近消失，表型与喂食无蛋白饲料的野生型小鼠如出一辙。上皮细胞的抗原提呈，是 Tr1 存在的前提。
图1 Tr1细胞的出现依赖于食物抗原 (左图) 以及 IEC 的抗原提呈功能（右图）
真正把这项工作与既往研究区分开来的，是随后的直接证据。团队从小肠分选出 EpCAM⁺CD45⁻的上皮细胞，把它们表面 MHCII 上结合的多肽整体洗脱下来做质谱——即免疫肽组学（immunopeptidomics）。在酪蛋白饲料喂养的对照小鼠中，他们鉴定到 8 条来自 β-酪蛋白的多肽，集中落在 Cb70–84与 Cb95–112两个区段；而在氨基酸饲料喂养或上皮 MHCII 敲除的小鼠中，这些多肽都不存在。这是第一次真正"看见"肠道上皮细胞的 MHCII 上装载着食物来源的抗原肽。
有了 IEC 提呈的抗原，还要证明有细胞可以识别它。团队从单细胞 TCR 数据中挑出扩增程度最高的 133 条 TCR（Tr1 来源 61 条、Treg 来源 72 条），逐一克隆进 NFAT-GFP 报告的 T 细胞杂交瘤，再用上述 8 条 IEC 所提呈的酪蛋白多肽刺激。结果泾渭分明：61 条 Tr1 来源的 TCR 中有 6 条被激活，而 72 条 Treg 来源的 TCR 无一响应。团队进一步制备了 Cb98–112:I-Ab四聚体，在小鼠体内直接"钓"出识别这条表位的细胞——它们高度富集在 Tr1 之中，在 Treg 和其他 CD4⁺ T 细胞中则十分罕见；而喂食不含酪蛋白的乳清饲料的小鼠，则完全钓不到。至此，抗原、受体、细胞三方形成闭环：食物抗原确实被MHCII分子提呈在上皮细胞表面，确实有特定的 T 细胞克隆识别它，而这些克隆正是 Tr1。
图2 在克隆的 133 个 TCR 中，只有 Tr1 细胞来源的 TCR 可以特异性识别由 IEC 提呈的食物抗原
团队接下来关注Tr1细胞如何收到上皮细胞调控：从小肠分离的Tr1细胞单独培养12小时内即丢失IL-10表达，而Treg保持稳定；与上皮细胞共培养可挽救IL-10表达，但前提是上皮细胞既表达MHCII、又来自摄入过酪蛋白的小鼠。在成年小鼠中诱导性敲除IEC MHCII后，食物抗原特异性T细胞总数不变，改变的仅是IL-10的关闭。可见Tr1表型依赖与上皮细胞持续的抗原特异性互作实时维持。
那么 Tr1 又是从哪里来的？团队通过一系列过继转移实验给出了一个清晰的两步模型。他们构建了携带 Cb4-7 TCR 的转基因小鼠（这条 TCR 正是前述筛选中对 IEC 提呈的酪蛋白抗原 Cb98–112反应最强的一条）把其中的初始 T 细胞转入不同受体小鼠。结果显示：在 DC 缺失 MHCII 的小鼠中，供体细胞在肠系膜淋巴结里既不增殖、也不活化，始终停留在初始状态；而在上皮缺失 MHCII 的小鼠中，供体细胞能够正常活化并抵达小肠，却怎么也变不成 Tr1。用 FTY720 封锁淋巴细胞离开淋巴结，小肠中的 Tr1 同样大幅减少。三个阶段细胞的转录组比较更是把这一点推到了极致：淋巴结中刚被致敏的细胞，与已迁移到小肠但未获上皮再刺激的细胞，转录组几乎一模一样；只有真正接受了上皮再刺激的那一群，才获得完整的 Tr1 特征基因谱。也就是说，专职抗原提呈细胞在淋巴结的致敏活化，上皮细胞在小肠组织内的再刺激——两步对Tr1细胞的分化缺一不可。
那么一个更有意思的问题随之而来：作者发现不同食物蛋白种类，其诱导 Tr1 细胞的能力竟然是不同的，为何酪蛋白可诱导Tr1，而花生、麸质与卵清蛋白几乎不能？团队以含五种蛋白的混合饲料喂养小鼠，对肠腔内容物与上皮MHCII结合肽同步质谱：肠腔中五种蛋白的降解肽均可检出，但被上皮MHCII装载的仅有酪蛋白与乳清来源者，且恰为预测亲和力最高的序列。原因在于上皮细胞缺乏抗原加工机器，无法处理完整蛋白，只能装载肠腔消化中已生成的多肽。因此食物蛋白能否进入上皮–Tr1通路，取决于其在肠腔中的消化产物能否天然形成高亲和力MHCII结合肽。
既然限速环节在于肠腔消化，能否绕过该步骤将表位直接递送至上皮？团队以自主研发的靶向葡萄糖转运体的葡萄糖化纳米颗粒（PGNP）为载体，灌胃后1小时该载体在近端小肠达峰，且几乎仅被上皮细胞摄取。颗粒中装载8条源自花生主要过敏原Ara h 1、Ara h 2与Ara h 3的合成多肽（可结合MHCII，但无法由肠腔消化天然产生）。花生致敏的BALB/c小鼠连续给药三周后，激发所致低体温显著减轻，血清花生特异性IgE、IgG1与mMCP-1水平均下降。
图3 模式图：食物耐受的两条平行通路。上：酪蛋白、乳清等"强Tr1诱导物"在肠腔消化中天然产生高亲和力 MHCII 结合肽，被小肠上皮细胞的 MHCII 直接装载；在肠系膜淋巴结经专职抗原提呈细胞致敏的前体 T 细胞迁移至小肠固有层后，通过与上皮细胞的持续抗原特异性接触被诱导为 FOXP3⁻IL-10⁺ Tr1 细胞，维持对该食物抗原的耐受。下：花生等"弱Tr1诱导物"在肠腔消化中无法产生合适的多肽，走不通“上皮-Tr1”通路，其耐受主要依赖经典的 FOXP3⁺ Treg；而以 PGNP 将合成表位靶向递送至上皮细胞，可人为打通这条通路，诱导出过敏原特异性的 Tr1 细胞从而达到治疗食物过敏的目的。
这项工作的首要意义，在于确立了一条此前未被认识的外周耐受通路。外周耐受长期几乎等同于专职抗原提呈细胞诱导Treg，而本研究表明，一类非造血来源、以屏障功能著称的上皮细胞可在生理状态下直接向T细胞提呈抗原，并诱导与维持一群独立的调节性T细胞。免疫肽组质谱、TCR功能实验与体内四聚体标记三条独立证据相互印证，将上皮细胞的抗原提呈身份落实到分子层面；对此前仅在病理模型中被研究的Tr1细胞，也首次指认了其生理性抗原与功能。
其次，本研究为食物过敏治疗提供了新路径。目前唯一可改变病程的手段是口服免疫治疗（OIT），但其使用完整天然蛋白，后者携带大量构象性IgE表位，可交联肥大细胞与嗜碱性粒细胞表面IgE。相比之下，本研究策略有两点结构性改进：其一，以序列明确的合成表位取代完整蛋白，短肽不具三维构象，交联IgE的能力与免疫原性显著降低；其二，PGNP依赖上皮细胞特异的葡萄糖转运体入胞，几乎不被CD11c⁺抗原提呈细胞摄取，大幅降低了引发速发型反应的风险。
从"屏障"到"哨兵"，再到如今的"抗原提呈细胞"，肠道上皮细胞的身份在过去二十年里被一步步改写扩充。这项研究再一次提醒我们：一个细胞的角色从来不由它最显眼的那项功能所定义。我们每天三餐吃下的东西，不只是能量和营养，也是免疫系统持续接收的信息流；而那层薄薄的、每三五天就完成一次更新的上皮，正在无声地把这些信息翻译成免疫系统能够读懂的语言。理解这门语言，或许就是我们让免疫系统重新学会"宽容"的起点。
该研究由实验室朱书教授团队完成，博士研究生周霆岳与特任副研究员张国荣为共同第一作者。研究得到了实验室Andrew Macpherson 教授和王育才教授的合作与指导，也感谢北京生命科学研究所徐墨研究员，广州医科大学赵金存教授，实验室王剑教授团队与李海教授团队提供的试剂和技术支持。
原文链接：https://www.vita-journal.com/vita/EN/10.15302/vita.2026.08.0066